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yxc

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楼主

发表于 2011-6-23 22:26 |只看该作者 |倒序浏览 |打印

【材料及准备】* w' m3 S) }3 Z+ u1 }; V Q& o
1.一般的盖玻片，或专用爬片；
2.根据需要剪裁成合适的大小，以备置于6孔板、12孔板或24孔板；
3.将剪裁好的爬片，置于浓硫酸中浸泡并过夜，第二天先用自来水冲洗20遍，再置于无水酒清中浸泡6小时，再用三蒸水冲洗3遍，放在饭盒或者玻璃培养皿中烘干后进行高压消毒。/ j# C$ D* _3 ~5 a3 e
4.高压后取出放入烤箱中烤干，备用。烤干后可放入超净台中。6 f9 B, @& O- t% E. [2 [& d& W
5.关于多聚赖氨酸，很多人都将玻片用此处理，以使细胞与玻片结合更牢。
6.常用的固定液1 ?: f" s+ w; H3 `: x
6.1丙酮可用于一般的免疫组化染色。
将纯的丙酮预先放入冰箱-20℃后便为冷丙酮（放心，丙酮在此温度不会为固体的）细胞爬片取出后，PBS洗2遍，便可加入冷丙酮于-20℃（丙酮有很强的挥发性，注意将含有丙酮和爬片的器皿盖严，防止其挥发）固定10分钟。取出后，室温吹干，然后放入-20℃保存。

6.2 多聚甲醛(常用4%)：可用于免疫电镜；也可用于免疫荧光以及TUNEL染色。 ) S4 u. K' o) m$ o2 i
主要检测组织内一些性能娇弱的抗原特别是细胞表面抗原，例如各类淋巴细胸分化决定簇(CD)、主要组织相容性抗原等; o4 `4 d7 S- A6 a
室温固定15分钟后，将表面液体吹干，入-20℃保存2 M- T* ~% p' u6 U
4 L. ~- ]4 w7 `+ v* o
6.3 95％乙醇，可用于免疫组化。- p: U: F0 @9 a+ R
优点：穿透性强、抗原性保存较好。
缺点：但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差，使蛋白变性的作用轻，固定后可再溶解；染色过程中，温育时间长，抗原可流失而减弱反应强度* |1 v3 f' i* D+ _+ A' T; U) Y
室温固定15分钟后，将表面液体吹干，入-20℃保存

6.4 甲醛(福尔马林)应用最广 5 p2 q, }8 X+ E% x8 N5 m4 s+ p
优点：形态结构保存好，且穿透性强，. Q+ g. \1 r+ S3 @
缺点：甲醛放置过久可氧化为甲酸，使溶液pH降低，影响染色；分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇，使之不能充分暴露。可造成假阴性的染色结果。7 v. h: ]# \6 X- |5 C. x+ }' N# V
$ N1 Y/ p! b; n
【细胞爬片步骤】
1.胰酶消化细胞后计数重悬细胞于完全培养基中。 q; K D3 p- T% W# g! U
2.加细胞时，根据玻片的大小，先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基，目的是使玻片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起，然后放玻片，防止加细胞悬液时玻片漂起，造成双层细胞贴片。整个过程注意无菌操作。
3.根据自己的需要选择合适的细胞密度种入培养板内即可
4.待细胞贴壁后，可去上清加含药培养基。
5.按照实验设计，作用一定时间后取玻片。取玻片时由于玻片与培养皿底结合较紧，张力较大，一般将注射器针头针尖向背面弄个小钩，这样将爬片轻轻勾起，用小镊子取出就可以了。如果要做诸如24h，48h，72h等这样时间点的实验的话，将所需数量的爬片取出时应用酒精灯火焰烧一下针头和镊子。末取出的可接着继续培养。
5 o; \8 s/ Q: W2 Q5 l1 \1 a" |8 W
【细胞爬片的固定】
细胞爬片取出后，一般用PBS洗2遍，然后再做固定。当然，根据研究目的，PBS洗也不是一定要做的，比如做凋亡的TUNEL染色时就避免洗，因为凋亡的细胞在洗的过程中有可能会脱落。
另外在保存细胞爬片的时候，一般用培养皿或板，先在皿底放一层面巾纸，然后再放爬片，这样方便做实验时取片。然后盖上盖子，并在盖子上做标记，为避免混淆，可用透明胶带将盖子和皿连在一起。一般-20℃保存2-3个月的片子做免疫组化是没有问题的。