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[请教] 【跪求流式大神】分选的流式图总是shift [复制链接]

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楼主
发表于 2015-3-9 11:12 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
本帖最后由 w343989328 于 2015-3-9 11:12 编辑 # K. d. f- o# }) R6 R; I/ h1 Z

) r2 W* M' ]! @' m+ e先说一下我实验的一些情况,我要从组织中分选一类细胞,两个表面抗原,一个正筛一个负筛。用的都是间标的抗体,杂一二抗。9 T+ F1 v1 W  K5 w' Q/ b2 j3 b
A抗体来源于大鼠,连着生物素的单抗,用Alexa Fluor 488标记的链霉素作为二抗;
5 ~# E6 Q6 `; x) ^/ b" A' ZB抗体为兔多抗,我用donkey anti-rabbit Alexa Fluor 555作为二抗。- ]2 N8 S2 u5 V0 s0 [$ J
学校的流式分选仪器是BD的AriaII,有358nm, 488nm, 633nm三种激发光,因此我这两个抗体只能选择488来激发。
% V: i5 z/ E% D$ C+ _8 R3 \
! ]4 L6 a) C% e3 X  A+ f8 y  R% j8 I实验的步骤大概是这样子:组织经胰酶+DNase消化,过滤得到单细胞悬液,镜检、计数。调整细胞浓度到1*10^7cells/ml,加入抗体。冰上同时孵育两个一抗一小时,洗两次,敷二抗半小时,洗两次,上流式前5min加入Hoechst33342,以便在区分掉死细胞。
) h# `+ L1 l) K  U3 A: P2 J  a8 s( N0 i6 F9 S4 i
以下是几次重复的结果:, W( V2 {/ }8 P5 x7 g' g
1.jpg
! O3 P' p  @) ~/ v首先是control组,不知道上头那坨东西是什么细胞(肯定不是死细胞,而且我抗体也不会加错),几次重复都或多或少有这么一群东西;
$ s/ W# h( ?2 m7 A其次,FITC通道勉强能有一群细胞出来,但是整个population,包括nagetive cells,都往右偏;+ P, a( y# z5 }0 }0 Z
而PE通道则整个群往上走,导致我没法分出细胞群。
9 ^- u, A3 ?% g: w: W7 A 2.jpg
! i7 e9 `% M5 U9 `7 D7 `这次结果好很多了,单独PE通道能分出群,但是一旦加入A抗体,则整个群依然往右shift。我这里要强调的是,基本上这个领域内所有的文献都报道这两个抗原属于两种细胞,而且我自己IF的结果也显示两种荧光并不merge,所以这里理论上不存在说细胞同时表达两种抗原的可能。$ }2 r# W4 X- j; t3 D
但是呢,加入A抗体后,基本所有的细胞都会往右shift,所以将PE阳性的细胞带出我用control框出来的门P4。我个人觉得这里应该不能用补偿把细胞往左调吧?
- f% U  r! M( m7 |8 k, M5 u 3.jpg / e9 I! V( L2 ^4 c
我重复了一次,和第二次的结果一样,细胞都是往右偏。
- K" b/ C8 ~  K. }, ~$ i5 h" Y" `6 r4 P
一开始怀疑A抗体浓度过高或者孵育时间太久,但是减少浓度或者时间并没能改善结果。3 P8 B1 k. I, S3 N: \+ a6 N; X
- l9 T9 v1 p$ j" D' `
不知道有没有大神能帮忙解惑,不胜感激!
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沙发
发表于 2015-3-9 11:26 |只看该作者
1. 重做荧光补偿
0 u# x/ ~$ ]- [$ q6 k" G7 `( b9 u* h
2. 洗涤流式细胞仪液路系统/ T5 v5 R+ O& N

' r7 q( r% H, d# o个人建议,不一定对。
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藤椅
发表于 2015-3-9 11:37 |只看该作者
回复 mantianfeiyun 的帖子0 m9 R' X9 n+ N% ~! `. w4 _& m1 G- l

7 R5 K4 Q5 T3 X8 i上面的图都是没有设置补偿的。3 @* [; M3 Y7 G3 d2 t$ I
有一点我不是很明白,我这样只是单个通道的shift,这样调补偿没有意义吧?
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板凳
发表于 2015-3-9 12:34 |只看该作者
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单标,不需要补偿。6 Z* V. X8 O/ z8 z3 S% G5 @
FLOWcheck、FLOWset都做过,没问题吧?. n/ H  {+ G+ ^- J" Y/ F) e) }
你检查下你的数据采集时间,是否跟你的上样浓度符合——比如上样量为80-100万个细胞,体积300-500ul,那么数据采集速度大致在500-700个/秒,搜集1万个数据也就10来秒的时间。如果采集时间为30-40秒,那就是有很多数据都被仪器当噪音屏蔽了,说白点就是FS阈值设定高了,你当前分析的都是些肥胖细胞,所以图形shift。贝克曼的仪器一般默认是100,BD的不知道,你将它设定低点,再检测。
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报纸
发表于 2015-3-9 15:12 |只看该作者
回复 dollar007 的帖子
: n' q* B* t7 B) H+ u4 K
2 j# |1 {# z, \/ t5 ]谢谢您。您说的FS阈值是指什么呢?
  U# A! t0 `/ H3 n) n  a# ]" s我用FSC SSC框下来的细胞是同一群,我不是很明白您说的肥胖细胞是指。。。
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地板
发表于 2015-3-9 17:06 |只看该作者
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发表于 2015-3-9 21:28 |只看该作者
求大神。。

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发表于 2015-3-9 21:41 |只看该作者
流式通常用FS设阈值,贝克曼的通常这个值是100,即FS=100.仪器默认FS值小于100的信号为噪音信号,不纳入分析。初设定参数时,如果不清楚此细胞的特性,我们通常把阈值由低调到高,调到什么值合适呢——调到FS/SS散点图左下角能略看到一些碎片即可。如果阈值设定过高,那么碎片群你图上看不见,同样的有部分细胞信号也被屏蔽了。我以前做CIK双阳检测的时候发现的这个问题,上样量与检测速度不匹配,后来发现是这个问题,阈值采用机器默认的FS=100,在当时的电压下,80-90%的细胞都被漏检了(被仪器屏蔽了,认为是噪音。)当我把FS调整为50的时候,这部分数据才得以在图上显现出来。“肥胖”细胞是我做MSC时爱用的口语,通常MSC“干性”好时,细胞很幼稚、细小,表现为FS和SS值都很小,而一旦MSC成熟或者衰老时,细胞会变得很扁平、肥大,此时FS和SS值都很高。通常而言,肥大细胞即尺寸大,内容物更复杂、丰富,表现为FS/SS值更高,更易被检测出。
/ r: T& y2 |, A9 U希望对你的实验有帮助。
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发表于 2015-3-10 09:20 |只看该作者
和机器 补偿什么的没有关系 是细胞本身的原因 你做的应该是上皮类细胞 如果是血液系统一般就不会
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发表于 2015-3-10 10:07 |只看该作者
回复 dollar007 的帖子
6 Y4 ~# [2 q% @* }1 U1 M
1 p+ ^9 E( n$ S: B  \. ]谢谢你!可是我觉得这里的shift跟SSC FSC两个参数没太大关系啊。
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