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消化小鼠iPS克隆胰酶的区别的疑问 [复制链接]

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楼主
发表于 2013-8-29 17:22 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
19号在论坛上发帖求助,好多热心的朋友帮忙,首先在这个感谢下大家,谢谢。
/ j3 A- n4 |) U5 h/ V接着,说下实验。我也采纳了几位的意见,做了平行实验,具体是这样的。由于之前的一批克隆没有消化开,但是终止消化了,就只能给铺到饲养层上面。但是,我的强迫症就来了。觉得这样一点用没有,开始新的一批还会是一样的结果,根本不解决问题。
: u. l, }2 ^8 n/ b+ k' K. V! a于是我想将已经贴在饲养层上面的没有消化开的克隆重新挑取消化:# i3 j9 E- P& o
1)A,0.25% tryspin/1mM EDTA消化10min;(之前使用的胰酶,购买液体直接分装)2 p& ?# C1 ~9 s  a# c
2)B,0.25% tryspin/1mM EDTA消化5min;(同上)/ _! k* A* M1 w1 i: O+ l8 k$ b& }
3)C,0.25% tryspin/1mM EDTA消化15min;(粉末,配配好过滤分装)
  s$ G% `4 G9 `2 N& X4 ?* u# a4)E,胶原酶IV消化20min! X. ?* p9 I( Q: Z% N9 K: E
结果发现,A、B和E没消化开,C也没有消化完全,但是感觉比其他3组要松散,故又消化了5min,结果终止后,只有C组全散开了,已经重新铺到饲养层上。
& e1 t) `+ D! ]! d8 e' T: \对于克隆需求的胰酶,我真是完全晕了。之前我们实验室一直都在使用粉末的胰酶,但是发现消化效果非常不好,消化一般细胞都很困难,于是购买了新的液体的胰酶。结果现在只有它对克隆有效??
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沙发
发表于 2013-8-29 17:45 |只看该作者
胶原酶IV(浓度0.5%)消化20-30min,然后直接吸掉胶原酶(无需终止),再加0.15%胰酶3-5min,拍拍即散,培养基终止。
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藤椅
发表于 2013-8-30 10:36 |只看该作者
回复 markllq 的帖子
4 q6 j$ a1 f4 n& x' Q' |+ ~. H' h4 G9 @
问一下问什么同时用2种酶消化,这样对细胞是不是会有些损伤。
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板凳
发表于 2013-8-30 16:33 |只看该作者
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回复 syacr 的帖子/ g6 H! L0 d2 i% c3 b& Q/ V# j
+ U! V5 [5 ~& k2 H4 |
不会,两种酶的作用是不同的,消化诱导后期的iPS细胞这是我觉得唯一有效的办法了。
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报纸
发表于 2013-8-31 09:21 |只看该作者
回复 markllq 的帖子
! i4 ?5 c5 ]5 o9 U
5 R2 ^4 T" O' C" q# D( j$ }还是第一次听到这样的办法,记下了,有机会试试,谢谢分享
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