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MEF及饲养层的制备(实验记录)   [复制链接]

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发表于 2010-11-25 13:46 |只看该作者 |倒序浏览 |打印
1.MEF的获取:(步骤4-12已经进行实践)4 `  L( Q# Y7 {
   (1)激素处理小鼠,同期发情和超数排卵
5 P' S/ e5 e9 e4 s; c+ L   (2)2:1合笼过夜(雌:雄)3 m2 ~+ a: J  w
   (3)取出有阴道栓(即乳白色或淡黄色冻胶状物,确定其已经怀孕)的开始记时间为0.5天  
6 B) `$ N4 g/ o4 D, c   (4)取出妊娠12.5-14.5天的小鼠为实验材料% L$ p- o9 Z6 o- |; \/ a4 Q0 R! r
   (5)颈椎脱臼法处死孕小鼠,放于盛有75%酒精的烧杯中消毒,拿到超净工作台上解剖,先剖开腹部皮肤,暴露子宫,然后换另外一套手术器械,用眼科镊提起近子宫颈端,分离子宫系膜,剪断子宫角,取出子宫,置于装有PBS的培养皿中。
6 ]: G; V0 F) u  c" ?2 [* {   (6)取出胎鼠,在PBS中洗涤数次。去除头、尾、内脏和四肢,仅留躯干部。在PBS中充分漂洗,弃除红细胞。(用两个镊子配合即可除去羊水膜、胎盘、头尾、内脏、四肢)(若是想培养神经干细胞,则用剪刀剪取前脑进行培养即可)(可以一起处理多个胚胎)
: B9 J5 z- a* r" X; \2 g2 {   (7)在新的培养皿中加入少量PBS,放入躯干部分,用眼科剪刀剪成1mm3以下的组织块碎片(可以剪的更碎一点,下步的消化时间就可以缩短)。
9 N# n! K# C; S9 n. j3 E   (8)加入2~4ml 0.25%胰蛋白酶,培养箱中消化10—15min,消化结束后加入等体积(多加点也行,只要不是少加,保证彻底的终止消化反应)的MEF Medium终止消化反应,轻轻吹打,使细胞分散。(做原代消化的时间稍长,胰酶用量也大,若是做传代,则只需加入500微升,最多1ml的胰酶,消化1~3min。)(躯干组织不易消化,做原代和传代时,故都用0.25%胰蛋白酶;而脑组织较易消化(脑肿瘤组织),原代和传代都用0.05%胰蛋白酶。)(消化可能不完全,也可室温静置5-10min,弃组织块,这样下面过滤就相对容易。)(如果消化得到的细胞太少,可以离心弃上清,PBS洗涤,重新加胰酶消化)(胰蛋白酶,Trypsin ,最适条件pH8.0,37度,溶液中钙镁离子和血清会降低其活力,故消化用的胰蛋白酶中加入了EDTA。消化结束时加入含血清的培养基即可终止反应) 6 P  I# h6 m9 A& ^7 W
  ( 9)将收集的细胞悬液离心,1500rpm, 4min,弃上清,加入红细胞裂解液(3~5倍体积的细胞体积),轻轻吹打1min,离心除上清,若仍有红细胞残留,则须继续进行红细胞裂解步骤。
$ U. T# u, R/ H2 v6 e# F* r- `8 X2 U  (10)离心,弃上清,重悬细胞,过滤(200目筛网)并收集滤液,离心除去上清。
  c' T' D5 g4 m  m  (11)用MEF Medium洗涤沉淀,离心除上清,重悬细胞,铺板即可。置于37度5%CO2饱和湿度培养箱中培养。(一只老鼠会有多个胚胎,得到的单细胞,可铺到三个培养皿中或者更多的培养皿中进行培养)/ k- Z$ n3 ~& a: Z* V! f. w4 @
(12)第二天换液,随后每2天换液一次。培养2~4d后,MEF接近汇合,即可按1:3比例传代培养。$ |/ Q, Y" ^  v! @# r( a
& r* t, F. s1 I
要点: 无菌是操作关键, 动物皮毛不能直接或间接接触到子宫, 分离子宫时必须换用另一套无菌的眼科剪和眼科镊。培养同一株胚胎干细胞最好延用相同品系小鼠来源的成纤维细胞。
  {5 A8 j1 D) Y% D' \要点: 仔细观察原代细胞有无被杂菌污染的迹象, 并且检测支原体, 确定无污染后传代扩增。% L2 J- j2 A& J; l, M$ s: e8 M
2.MEF传代(本步骤已经进行实践)+ E& L; g% Z9 [) u
(1)消化:吸去培养皿中的MEF Medium,用PBS洗涤1次(加5ml)后,加入1ml 0.25%Trypsin/EDTA 37度消化1min(时间可以浮动,视消化效果定,在显微镜下观察, 当少量细胞漂浮, 贴壁的细胞层出现裂隙时,即可终止反应)。
3 X' A9 E5 }. P, x! q1 ], d' R6 G(注:加PBS洗涤,是为了除去血清,否则胰酶发挥不了作用)
( ?! w% V. \! t5 _(2)终止消化:加入5ml MEF Media终止消化(此时总体积为6ml),用吸管冲洗培养面并反复吹吸,使细胞离散成为单细胞悬液。(离心步骤省略:将细胞悬液移入离心管,1500rpm×4min。弃去上清液,用MEF Media重悬MEF成单细胞悬液。)" P  ^3 o6 |. W4 P0 b( _% M0 N
(3)分装接种:吸取2ml细胞悬液到新的培养皿中(其中已经加了8ml培养基),再取2ml单细胞悬液加到另外一个新的培养皿中(其中已经加了8ml培养基),此时原来的培养皿中还剩余2ml,吸取8ml培养基加入其中,轻摇,37度5%CO2饱和湿度的培养箱中培养。(1传3,其中2个是新的培养皿,1个是旧的(原先的),多省啊! 100mm的培养皿,通常加10ml培养基)
" W" Y4 Q( J% L. `. D7 E" t; V4 H(4)隔一天,视生长状况传代。) a, G9 p/ r/ Q0 m

" c. M5 B& b, ?7 [注意: 每次传代尽量把成纤维细胞消化、吹打成单细胞悬液.
+ d4 }* A$ v" I  i9 q: X$ o" V
* L( u5 w! k4 I
& y8 W; g9 `! F3 v( g0 v$ w3.冻存MEF(本步骤已经进行实践)0 Z* |% ^* Z2 R. c4 u: i
: s0 O0 k0 k5 x& K2 `# P( p& j
在P2传P3代时,取三分之一的dishes继续进行MEF传代操作,另外三分之二进行冻存处理(本实验中P2有27个dishes,其中8个继续做传代,成24个dishes;另外19个做冻存处理,每个dish冻存一管)。
" T* S, F/ t" ?( p7 n, ]2 x4 z7 p4 {- J(1)取出19 dishes,吸弃media,加PBS洗一次(5ml)。
/ F5 f$ ~( P8 s  k(2)加1ml trypsin下消化1分钟,加2ml media 终止消化,轻轻吹打下细胞并分散均匀,收集细胞悬液到15ml离心管中(本次三个dishes收集到一个15ml离心管中),再加1mlPBS冲洗dish,并转移到离心管中。
: u  a8 c) {0 E' V& D+ C(3)封口膜封口,放在离心机里,1500rpm,4度,4min,离心。与此同时,配制冻存液。取出DMSO(二甲基亚砜,作冻存剂。本实验室的DMSO是常温下保存在抽屉里的。瓶子是深色的。),喷撒酒精消毒,放在实验台上。取两支15ml的离心管,每管加9mlmedia,然后每管再加1ml DMSO,混匀。  w6 P: P0 R/ S) u1 _. i: u) o
(4)取出离心机里的离心管,喷撒酒精消毒,放在实验台上。取一管,倾倒去上清,加入3ml冻存液(因为要分装到3个冻存管中。冻存管总容量是2ml,最大刻度是1.8,本实验室通常加1ml冻存液进行保存),轻轻吹打几下,混匀细胞。取1ml,加入到冻存管中,放入冻存盒里(使用的是异丙醇冻存盒。异丙醇在冷冻细胞的过程中可以辅助实现缓慢降温,直接从室温放进-80可以达到近似于1度/分钟。异丙醇冻存盒在用之前要室温放置一段时间,让其达到室温后再用)。然后再对下一管进行操作。(应尽量避免细胞在常温下与DMSO的接触时间)' ^; ]- N. h  h9 ^0 |$ w: h
(5)把冻存盒放在-80度冰箱里过夜,第二天拿到液氮中冻存。(由于液氮罐已满,所以保存暂时保存在-80度冰箱里)1 W; ~! \/ O& e! I
       
9 k# a; L9 l; R3 |3 y/ W  B0 S      问题:一dishes太多,在消化操作时一定要快,否则第一个dish可能消化时间较长,影响细胞状态。& }7 \' R6 R5 G2 z/ a" @) J
            二加1ml PBS收取余下细胞时会,由于量太少易产生很多气泡,下次要增加量到2ml 。# [6 H1 w- j" q% q. U( {
            三冻存液使用的是MEF media + 10%DMSO,这样FBS含量少,对细胞状态产生影响,下次要增加FBS的含量(适当增加FBS的量有利于提高复苏时细胞的成活率)。(MEF media由DMEM 11965 +10%FBS+1%P/S)0 x0 G; f; ^) }- b/ K  o

% u9 d$ o. m2 |+ D5 g8 G, P: I# g; g% V2 V' U
. K* H* B0 Z0 Z1 K- u9 F

, s! _0 V1 r3 @; _  r
1 U; v0 R" p# ~: n
# g& o$ u/ X0 D  Z4. mitomycin C处理MEF,并冻存(本步骤已经通过实践)6 e( W5 G! }7 ~" l
(1)当P3代MEF生长接近汇合时,吸去原培养基,用PBS洗2次(每次5ml),然后加入4ml 10μg/ml的mitomycin C处理MEF细胞,置于培养箱内2h。8 E' \3 i" v7 T
(2)弃去mitomycin C,用PBS洗涤2次(每次5ml)。8 l* n3 ^  j& D0 n% V2 E
(3)加0.25%Trypsin  1ml消化1-3分钟,用2 ml MEF Media终止反应。轻轻吹打下细胞,并把悬液转移到15ml离心管中,用2ml PBS 洗涤,收集余下的细胞。(两个dishes的细胞转移至一个离心管中,总体积为5ml*2)
8 [( e* u' G  a. |( j(4)1500rpm, 4度,4min,离心。与此同时配制冻存液(20ml MEF media + 2.5ml FBS + 2.5ml DMSO)。(此处相对3中冻存液,提高了FBS的含量,以期维持更好的细胞状态)5 Z# R! Y5 c6 d# A5 z! r
(5)倾倒去上清,加2ml 冻存液重悬,分装到2个冻存管中,每管1 ml。标注信息。置于异丙醇冷冻盒中,放入-80度冰箱中过夜,第二天转移到液氮罐中保存。
: X4 q3 Z' l/ o3 G7 @
. R* V  b. l& O! X  c3 L注:上面用的mytomicin C 可以用MEF media (DMEM应该以可以吧)配制,也可以用无菌的PBS配制。(Mytomicin C是针剂瓶装的,10mg/支,可以采用无菌PBS溶解,配制成1mg/ml,装在15ml离心管中,锡纸包裹(需要避光),4度保存即可。用时再配制成工作浓度;若是用MEF media配制,可以直接配制成工作浓度,用时直接取用。最好买sigma的。)注意丝裂霉素C 的有效期和使用方法。若发现分装的丝裂霉素C 溶液析出结晶或溶液由浅蓝色转变成紫红色时, 说明丝裂霉素C已经失效, 不能再使用。! e, M( |- x) c3 Q, \$ c

; n1 k4 G8 @0 G( Q0 x% U5.复苏(本步骤已经通过实践)" F& `3 o3 S4 I+ H2 k4 I
(1)取出冻存管,在37度水浴中迅速融化(1-2min),当有少量冰块剩余时取出,用吸水纸拭干水,用75%酒精喷一下。(剩少量冰块与完全融化,效果差别不大。也可完全融化)
3 ?) j5 t/ R! s% `3 S7 h(2)用移液枪把冻存液转移至已加有5mlMEF Media的15ml离心管中1000转,4度,4min,离心。
- a9 O! e. b2 k! O(3)2ml MEF Media 重悬,转移至加有8ml MEF Media的100mm培养皿中,于37度5%CO2饱和湿度培养箱中培养。
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沙发
发表于 2010-11-25 13:46 |只看该作者
请求加精!!!

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藤椅
发表于 2010-11-25 14:41 |只看该作者
回复 2# nculsa747 ) `6 h* ^" ]) G+ B5 \7 [3 g
加为精华你向海洋大哥申请!呵呵!我给你加分!!谢谢分享!!!

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板凳
发表于 2010-11-25 15:23 |只看该作者
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回复 3# 懵懂干细胞 [/& b% E4 O+ q0 O3 _* O) j2 T& P
怎样的feeder是好的?楼主一般用什么方法来判定呢?处理后feeder在形态上有明显变化吗?

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报纸
发表于 2010-11-25 16:21 |只看该作者
回复 1# nculsa747
, N9 \9 H! O- N+ j( k- K, E) ^7 y9 H+ ~4 _4 A2 B  d

( Y2 ~) v/ t1 A- L6 a4 x7 M       楼主你好,我想请问下关于丝裂霉素C处理成纤维细胞问题。
$ p; u6 j7 \6 [" D' @0 O* E* v    我现在的成纤维没用丝裂霉素C处理,成纤维长得飞快,而iPS细胞长得很慢,估计是营养跟不上还是其他的啦?因为师兄买的丝裂霉素C是国产的,有效期只有3个月吧,已经过期了,所以才没用的。- C8 p/ |6 u  S/ d* z# v* Y+ `
    所以我想问一下,如果我用丝裂霉素C处理成纤维的话,可以复苏后再处理吗?因为冻之前处理的话,我害怕复苏效果不好。但是如果复苏后处理,丝裂霉素C有效期又要必须长才行,纠结啊......
1 z) Y3 @2 o7 a3 M      还有就是,我用六孔板养的细胞,一次加多少丝裂霉素C工作液啊?
, L6 z) [2 A" f/ i1 ^    科研计费不多,所以想丝裂霉素C这些试剂都只能买国产的,惨啊!!!
, Z1 R& ^. \* Y: h) P7 v    非常感谢
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地板
发表于 2010-11-25 21:49 |只看该作者
回复 5# CQ熊猫猫 3 i# z' h( k6 r  W' W

% j& ^# }; L( s# [5 ~4 K- J: O首先,你要搞清楚一个问题,iPS和ES是要在Feeder上才能很好的生长的(悬浮培养暂且不说)。为什么用Feeder呢,因为它不能够分裂,但可以分泌一些生长因子之类的东西供iPS\ES生长。你没有用MMC处理MEF,就用其培养iPS,你的iPS如果能长起来就怪了!
% f1 L" z  B( W; T* t可以在复苏后用MMC处理MEF,冻存前处理MEF,复苏时会有一部分死亡,可以适当增加铺板密度。我们通常一次处理很多MEF成Feeder,然后计数,冻存,用时复苏即可。如果你想复苏后再处理,当然也是可以的。- t/ S) t0 O# m5 S2 v
你经费有限,还用六孔板养MEF,看来你们还是有钱。一般养在100mm 培养皿中就行了(corning的就很好)。100mm dish加3-4mlMMC即可。六孔板,每孔加500微升到1毫升应该是够了。- t" n6 N3 h$ ~1 Q
祝你好运!
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发表于 2010-11-25 21:54 |只看该作者
回复 4# treestem 1 A! `) r# ~3 N0 k. D/ X# X
/ l9 C% P6 \; b0 ^' r& B: z2 `8 J
我们通常前一天复苏feeder,第二天用它来接种ESC。标准是:密度要适中,过密细胞不易贴壁,过疏细胞易分化。feeder的状态好坏,讲不太清楚,凭个人经验。mef 与feeder形态应该没有多大差别,只是后者不能够分裂而矣。
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发表于 2010-11-26 00:36 |只看该作者
回复 6# nculsa747 1 o# ^) O# l; l- k

: V' h, ]( z  p) y: I) U9 E  P7 I/ J3 u  B0 K* [  ^
    谢谢你的建议,其实我不是诱导iPS细胞,我是买的iPS细胞株,向心肌细胞分化!% d$ d8 v' p" `% o7 V
  之前我师兄真的没用丝裂霉素C处理,就直接把iPS细胞种在成纤维上面,传代后,差贴下来的成纤维又会长出iPS团来。但是我还是想处理下成纤维细胞,这样iPS细胞也许会长得快些。
& B5 J; E) J0 E- v$ l; H  制作成纤维的时候,我是用的10cm的大培养皿,冻之前改培养在6孔板的,方便以后复苏iPS细胞,因为iPS细胞不能大规模的培养,所以才用的6孔板, E6 j* l" l& G( D
  请问国产的丝裂霉素C那个公司的比较好,有效期比较长,呵呵!谢谢了
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发表于 2010-11-26 13:15 |只看该作者
感谢楼主的精彩实验笔记,一直想了解关于MEF的具体步骤。

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发表于 2010-11-26 13:36 |只看该作者
回复 8# CQ熊猫猫
5 b- [$ i8 A% J" p+ F
/ u0 I' C: t/ W, F& \5 s: V7 B* h& n: ~5 i$ D7 H
抱歉哈,我没有养过iPS,只是猜测既然它有干性,应该和干细胞有类似的特性。我不清楚国产的哪个公司的更好,还请其它战友帮忙回答一下。
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